目的 建立芥子及其炒制品超高效液相色谱(UPLC)特征图谱,对比不同基原芥子及炒制品UPLC特征图谱的异同。
方法 采用UPLC法测定白芥子、黄芥子及其对应炒制品的特征图谱,并对特征图谱的结果进行化学模式识别研究。
结果 不同基原芥子及特征图谱差异较大,其中,峰4(芥子碱硫氰酸盐)、峰5、峰8(芥子酸)为不同基原芥子的共有特征峰,且可传递至对应炒芥子;峰1(白芥子苷)、峰2(对羟基苯甲醇)、峰3、峰6、峰7为白芥子的专属成分,峰11(4-羟基芸苔葡糖硫苷)、峰12 ~ 峰16为黄芥子的专属成分;另外,峰2、峰9、峰10为区分白芥子和炒白芥子的重要标志物,峰11为区分黄芥子和炒黄芥子的重要标志物。
结论 本研究建立的UPLC特征图谱方法可以区分不同基原芥子及其炒制品,为芥子、炒芥子的质量控制提供依据。
芥子为十字花科植物白芥(Sinapis alba L.) 和芥[Brassica juncea (L.) Czern. et Coss]的干燥成熟种子,前者常称为“白芥子”,后者常称为“黄芥子”[1]。不同基原芥子化学成分和药效略有差异,白芥子富含白芥子苷[2],辛温力强;黄芥子主要成分为黑芥子苷[3],辛散缓和;炮制后两者辛温之性均趋于缓和、药效增强[4-9],炒制程度对炒芥子的药效具有一定影响[10]。由于不同基原芥子性状相近,但药效和市场流通价格存在差异,药材流通中常出现以两种基原及其炒制品混合使用的情况,易造成用药偏差。因此,亟须建立直观、可靠的检测方法,实现不同基原芥子及其炮制品的精准鉴别,规避基原混淆导致的用药偏差。
现代研究常采用特征图谱的分析方法来评价中药材的质量[11-13]。目前已有研究利用HPLC或超高效液相色谱(UPLC)指纹图谱、特征图谱结合聚类分析、主成分分析等化学模式识别方法,实现了白芥子与黄芥子[14]、白芥子与炒白芥子[15]的区分,并考察了芥子炒制前后化学成分的变化规律[16-17],表明特征图谱结合化学模式识别用于芥子基原与炮制品鉴别具有可行性。然而,现有研究多针对单一基原或饮片、水煎液、配方颗粒等特定剂型,尚缺乏将白芥子、黄芥子及其各自炒制品置于同一色谱体系下进行系统比较的研究,对炒制程度的评价亦仍以性状描述为主,缺乏客观量化依据。
基于上述问题,本研究建立UPLC特征图谱分析方法,用于区分不同基原芥子及炒制品,为芥子的质量控制提供依据;同时结合化学模式识别分析,明确白芥子、黄芥子及其炮制品的特征图谱差异性,为炒制程度的客观评价提供量化参考,弥补传统性状判断的主观不足。该方法可用于药材流通环节的基原鉴定与炒芥子的质量评价,为芥子质量控制标准的制定及临床安全、合理用药提供技术支撑,具有良好的实用价值。
1 仪器与材料
1.1 主要仪器
1290型Agilent高效液相色谱仪(美国安捷伦公司);H-Class Waters高效液相色谱仪(美国沃特世有限公司);Vanquish Thermo高效液相色谱仪(美国赛默飞世尔科技有限公司);ME204E万分之一分析天平(瑞士梅特勒托利多公司);XP26百万分之一分析天平(瑞士梅特勒托利多公司);KQ500DE数控超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司);HWS28型恒温水浴锅(上海一恒科技有限公司);Milli-Q Direct超纯水系统(默克德国股份有限公司)。
1.2 主要药品与试剂
芥子碱硫氰酸盐(批号:111702-201605,纯度99.0%)、对羟基苯甲醇(批号:111970-202303,纯度97.4%)对照品均来源于中国食品药品检定研究院;4-羟基苯甲酰胆碱(批号:STF6070110,纯度98.0%)、芥子酸(批号:ST57000120,纯度98.0%)、白芥子苷(批号:STC2200105,纯度98.0%)、4-羟基芸苔葡糖硫苷(批号:STF2230205,纯度95.0%)对照品均来源于上海诗丹德标准技术服务有限公司;甲醇(天津市富宇精细化工有限公司,分析纯);磷酸(天津市科密欧化学试剂有限公司,色谱纯);乙腈(默克股份有限公司,色谱纯);水为超纯水(实验室自制)。
15批黄芥子药材和15批白芥子药材经广州中医药大学中药学院黄海波教授鉴定分别为十字花科植物芥[Brassica juncea (L.) Czern. et Coss]的干燥成熟种子和十字花科植物白芥(Sinapis alba L.)的干燥成熟种子。参照《中国药典》2025年版[1]炒芥子项下,以及《北京市中药饮片炮制规范》2023年版[18]的规定,分别取15批黄芥子和白芥子药材制备炒黄芥子和炒白芥子饮片,具体炮制方法:取芥子药材,除去杂质,在120 ℃下炒制10 ~ 15 min,即得。60批芥子及炒芥子的产地及批号详见表1。
2 方法与结果
2.1 色谱条件
采用YMC Triart C18(150 mm × 2.1 mm,1.9 μm)色谱柱;以乙腈为流动相A,以0.1%磷酸溶液为流动相B,按表2程序梯度洗脱;流速为0.30 mL/min,柱温为30 ℃,检测波长为234 nm,进样量为2 μL。
2.2 溶液的制备
2.2.1 对照品溶液
分别取芥子碱硫氰酸盐对照品、芥子酸对照品、白芥子苷对照品、对羟基苯甲醇对照品、4-羟基苯甲酰胆碱对照品、4-羟基芸苔葡糖硫苷对照品适量,精密称定,加75%甲醇分别制成每1 mL含芥子碱硫氰酸盐200 μg、芥子酸20 μg,白芥子苷150 μg、对羟基苯甲醇150 μg、4-羟基苯甲酰胆碱50 μg、4-羟基芸苔葡糖硫苷20 μg的对照品溶液,即得。
2.2.2 供试品溶液
根据《中国药典》2025年版[19]要求,将60批芥子及炒芥子样品粉碎至能全部通过二号筛,但混有能通过四号筛不超过40%的粉末,即得样品粗粉。取上述样品粗粉约0.5 g,精密称定,置具塞锥形瓶中,精密加入75%甲醇25 mL,称定质量,加热回流30 min,放冷,再称定质量,用75%甲醇补足减失的质量,摇匀,滤过,取续滤液,即得。
2.3 方法学考察
2.3.1 专属性考察
取白芥子(批号:BJ-1)粗粉约0.5 g,按照“2.2.2”项下方法制备供试品溶液,精密吸取供试品溶液、“2.2.1”项下对照品溶液与空白溶剂(75%甲醇)各2 μL,按“2.1”项下色谱条件进样分析。结果如图1所示,供试品与对照品相应的保留时间处有相同的色谱峰,且空白溶剂无干扰,说明建立的方法专属性良好。
2.3.2 精密度考察
精密吸取同一份白芥子供试品溶液(批号:BJ-1),连续进样6次,以芥子碱硫氰酸盐色谱峰为参照峰S,计算峰1 ~ 峰3、峰5 ~ 峰8与S峰的相对保留时间和相对峰面积。结果显示,各特征峰与S峰的相对保留时间和相对峰面积的RSD值均小于5%(n = 6),说明仪器精密度良好。
2.3.3 重复性考察
精密称取同一批白芥子粗粉(批号:BJ-1)6份,按照“2.2.2”项下方法制备供试品溶液并进行测定,以芥子碱硫氰酸盐色谱峰为参照峰S,计算峰1 ~ 峰3、峰5 ~ 峰8与S峰的相对保留时间和相对峰面积,结果显示,各特征峰与S峰的相对保留时间和相对峰面积的RSD值均小于5%(n = 6),说明所建立的方法重现性良好。
2.3.4 稳定性考察
精密吸取同一份供试品溶液(批号:BJ-1),分别于0、2、4、8、12、18、24 h进样,以芥子碱硫氰酸盐色谱峰为参照峰S,计算峰1~峰3、峰5 ~ 峰8与S峰的相对保留时间和相对峰面积,结果显示,各特征峰的相对保留时间和相对峰面积的RSD值均小于5%(n = 7),表明供试品溶液在24 h内稳定性良好。
2.4 不同基原芥子及其炒制品UPLC特征图谱的建立及相似度分析
2.4.1 不同基原芥子及其炒制品特征图谱的建立
取15批黄芥子及其炒制品、15批白芥子及其炒制品分别制备供试品溶液并进样分析,将特征图谱数据文件导入《中药色谱指纹图谱相似度评价系统》(2012版)软件中,分别以批号HJ-1、CHJ-1、BJ-1、CBJ-1样品特征图谱为参照进行多点校正和共有峰匹配,选择分离度较好、峰型较高或成分已知的共有峰分别作为不同基原芥子特征图谱的特征峰,15批白芥子特征图谱标识出8个共有特征峰,其对应炒制品标识出9个;15批黄芥子标识出9个共有特征峰,其对应炒制品标识出8个,叠加图分别如图2 ~ 图5所示。
经过对照品液相色谱保留时间比对以及紫外3D光谱分析,确认峰1为白芥子苷、峰2为对羟基苯甲醇、峰4为芥子碱硫氰酸盐、峰8为芥子酸、峰10为4-羟基苯甲酰胆碱、峰11为4-羟基芸苔葡糖硫苷,对照品与供试品特征图谱叠加图如图6所示。
采用《中药色谱指纹图谱相似度评价系统》(2012版)软件,以平均数法分别自动生成不同基原芥子及炒芥子对照特征图谱,对比图如图7所示。不同基原芥子特征图谱差异较大,峰4(芥子碱硫氰酸盐)、峰5、峰8(芥子酸)为不同基原芥子的共有特征峰,且该3个特征峰在炒芥子特征图谱中仍共有,说明2种基原芥子在化学成分组成上存在一定共性,并可传递至对应炒制品中。
白芥子特征图谱中呈现白芥子苷(峰1)、对羟基苯甲醇(峰2),为芥子(白芥)基原的专属成分,另外峰3、峰6、峰7也仅在白芥子特征图谱中体现;黄芥子特征图谱呈现4-羟基芸苔葡糖硫苷(峰11),为芥子(芥)基原的专属性成分,峰12 ~ 峰16也仅在黄芥子特征图谱中体现。
对比白芥子与炒白芥子特征图谱发现,两者呈现7个共有特征峰(峰1、峰3 ~ 峰8),白芥子经炒制后,峰2消失,峰9和峰10(4-羟基苯甲酰胆碱)出现,说明峰2(对羟基苯甲醇)受热不稳定,峰9和峰10为炒制期间的产物,暗示通过观察峰2、峰9、峰10的变化情况,可判断炒白芥子的炒制程度。
黄芥子与炒黄芥子呈现7个共有峰(峰4、峰5、峰8、峰12 ~ 峰16),黄芥子经炒制后,峰11(4-羟基芸苔葡糖硫苷)消失,说明峰11为受热不稳定成分,可通过观察该特征峰在炒制期间的变化情况来判断炒黄芥子的炒制程度。
2.4.2 不同基原芥子及炒制品相似度评价
采用《中药色谱指纹图谱相似度评价系统》(2012版)软件,分别对15批白芥子、15批炒白芥子、15批黄芥子和15批炒黄芥子进行相似度评价,结果如表3所示,与各自生成的对照特征图谱相比,不同基原芥子及炒制品的相似度均大于0.90,说明不同批次的白芥子、炒白芥子、黄芥子、炒黄芥子质量稳定均一,差异不大,但无法反映不同基原芥子及炒制品的质量差异,需进一步采用多元化学模式识别进行质量评价。
2.5 不同基原芥子及其炒制品特征图谱的化学模式识别研究
2.5.1 聚类分析
采用SPSS 20.0软件,对60批不同基原芥子及炒制品特征图谱进行分析,以16个特征峰的峰面积(缺失峰的相对峰面积记为0)为变量,标准化后采用瓦尔德法,以平方欧氏距离为测度,结果见图8,当平方欧氏距离为25时,白芥子及炒制品与黄芥子及炒制品各成一类,说明不同基原芥子及炒制品特征图谱差异较大;当平方欧氏距离为5时,白芥子、炒白芥子、黄芥子、炒黄芥子各成一类,说明同一基原芥子的生品与炒制品间也存在差异。
2.5.2 正交偏最小二乘法-判别式分析
为了进一步区别不同基原芥子及炒制品特征图谱,采用SIMCA 14.1软件,以16个特征峰的峰面积(缺失峰的相对峰面积记为0),建立正交偏最小二乘法-判别式分析(orthogonal partial least squares discriminant analysis,OPLS-DA)模型,模型累计解释能力参数R2X、R2Y分别为0.925、0.957,预测能力参数Q2 为0.947,均大于0.5,证明模型有效且具有良好的预测能力,其得分图见图9,60批样品可分为4类,该结果与聚类分析结果一致。
为验证所构建OPLS-DA模型的可靠性,进行内部置换检验,检验次数设置为200次,结果如图10所示,左端随机排列的R2 、Q2 均小于右端的原始值,回归曲线斜率为正值,且Q2 的回归曲线相交于y轴的负值,说明模型没有过度拟合。变量投影重要性(variable importance in projection, VIP)值见图11,以VIP值大于1.0为标准,共筛选出8个差异性成分,依次为峰11、峰8、峰2、峰9、峰10、峰15、峰4、峰5,说明该8个特征峰为不同基原芥子及炒制品的差异性标志物。
2.6 不同基原芥子及其炮制品特征峰的变化规律研究
对炒芥子的炒制时间进行考察,对比各特征峰在炒制过程中的变化情况。
2.6.1 不同炒制时间对白芥子特征图谱的影响
取白芥子药材(批号:BJ-1),除去杂质,考察在120 ℃下不同炒制时间(5 ~ 20 min)对特征图谱的影响。取不同炒制时间的样品,按照“2.2.2”项下分别制备供试品溶液,采用“2.1”项下色谱条件测定特征图谱,叠加图见图12。结果显示,炒制时间超过8 min,峰2消失,而随着炒制时间延长,峰9和峰10由无到有,峰面积逐渐增加,其余特征峰变化无明显规律。说明峰2为受热不稳定成分,在炒制过程中峰面积逐渐减小,而峰9、峰10是炒制过程中产生,在一定时间范围内,有增大的趋势,峰2、峰9、峰10可以作为区分白芥子和炒白芥子的重要标志物,可观察峰2是否消失,峰9和峰10是否出现来评价炒白芥子的炒制程度是否恰当;当炒制时间大于15 min或小于10 min时,饮片性状不符合《中国药典》2025年版[1]炒芥子(白芥)项下的描述,结合饮片性状以及特征图谱的结果,确定炒白芥子的饮片炒制时间以10~15 min为宜。
2.6.2 不同炒制时间对炒黄芥子特征图谱的影响
取黄芥子药材(批号:HJ-1),除去杂质,考察在120 ℃不同炒制时间(5 ~ 20 min)对特征图谱的影响。取不同炒制时间的样品,按照“2.2.2”项下分别制备供试品溶液,采用“2.1”项下色谱条件测定特征图谱,叠加图见图13。结果显示,随着炒制时间的延长,峰11峰面积逐渐降低,当炒制时间超过10 min时,峰11消失,其余特征峰变化无明显规律。说明峰11为受热不稳定成分,可作为区别黄芥子和炒黄芥子的重要特征性成分。性状方面结果显示,随着炒制时间增加,炒黄芥子饮片颜色逐渐加深,当炒制时间大于15 min或小于10 min时,饮片性状不符合《中国药典》2025年版[1]炒芥子(芥)项下的描述,结合饮片性状以及特征图谱的结果,确定炒黄芥子的饮片炒制时间以10~15 min为宜。
3 讨论
3.1 特征图谱色谱条件优化
本研究对芥子特征图谱UPLC色谱条件进行对比考察,经过3D全波长扫描发现,波长在230 ~ 250 nm之间,色谱峰较丰富,尤其在234 nm时色谱峰的整体响应较高,因此选择234 nm作为建立芥子特征图谱的检测波长。对比不同有机相(甲醇、乙腈、乙腈∶甲醇=4∶1)以及水相(0.1%冰醋酸、0.1%甲酸、0.1%磷酸)对芥子特征图谱的影响,结果显示,当流动相为乙腈和0.1%磷酸时,基线平稳,且色谱峰分离度和峰型较好。在色谱柱的选择方面,对比了Waters BEH C18 色谱柱(150 mm × 2.1 mm,1.7 μm)、Waters HSS T3色谱柱(2.1 mm × 150 mm,1.8 μm)和YMC Trait C18色谱柱(150 mm × 2.1 mm,1.9 μm)3款色谱柱对芥子特征图谱影响,其中YMC Trait C18色谱柱(150 mm × 2.1 mm,1.9 μm)对色谱峰的分离度最佳,因此后续选择该款色谱柱作研究。
3.2 供试品溶液制备前处理考察
本研究前期对供试品溶液制备方式进行考察,分别对比了不同提取溶剂(甲醇、75%甲醇、50%甲醇)、不同提取方式(加热回流提取、超声提取)、不同提取时间(15 ~ 60 min)对特征图谱的影响,以“总峰面积/称样量”为特征图谱的考察标准,最终确定以75%甲醇25 mL加热回流提取30 min为最佳方式。
3.3 化学模式识别分析
本研究建立了不同基原芥子与炒芥子的特征图谱,对60批样品的特征图谱结果进行聚类分析,初步确定不同基原芥子及炒芥子化学成分差异较大,继续进行OPLS-DA,指导不同基原芥子及炒芥子的分类,得出造成特征图谱差异的8个特征峰,其中峰4(芥子碱硫氰酸盐)、峰5(芥子酸)2个特征峰为芥子的代表药效成分,提示不同基原芥子及炒芥子的成分差异为其药效差异的关键。
3.4 炒制时间对特征图谱的影响分析
不同炒制时间对炒芥子性状及特征图谱的特征峰影响较大,其中炒白芥子需要关注的特征峰为峰2是否消失,峰9和峰10是否出现;炒黄芥子的观察指标为峰11是否消失。通过测定炒制前后样品的特征图谱,结合炮制后的性状描述,即可观察炒芥子是否充分,降低人为主观性的误差,为炒芥子的炒制程度提供依据。
综合以上试验结果,该特征图谱方法可用于区别不同基原芥子及炒制品,可更全面评价芥子及炒芥子的质量标准,实现不同基原芥子的精准区分,规避基原混淆导致的用药偏差。
3.5 小结
本研究采用UPLC法建立不同基原芥子及炒芥子的特征图谱,以建立的方法分别对15批白芥及对应炒白芥、15批黄芥及对应炒黄芥的相似度进行比较,实现对不同基原芥子及炒制品中有效成分的定性分析,同时,该方法可用于区别不同基原芥子及对应炒制品,具有专属性强、分析时间短的优势,能够有效提升芥子的质量控制水平。
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